Marker 11 DNA Marker

建議上樣量

3-5 μl/次。可根據上樣孔大小選擇合適上樣量。

Marker 11已預混上樣緩沖液，可直接進行電泳分析。

建議電泳條件

8 cm  1.7 %瓊脂糖凝膠，

0.5×TBE，5 V/cm，1h。

保存條件

常溫保存3個月，長期保存請置于-20℃。

各條帶含量

指示帶     125 ng/5μl

非指示帶   50 ng/5μl

●  對于非變性凝膠電泳，Marker是否需要DNA變性?

答：本公司Marker產品中只有Lambda DNA Marker為質粒酶切產物，在電泳上樣前如加熱處理可獲得最佳效果，其余產品均不需點樣前加熱處理；另外電壓太高也會使凝膠過熱和DNA變性造成帶型異常。

●  當DNA停留在凝膠點樣孔處時該怎么辦？

答：檢查膠濃度是否在適合分離DNA片段的范圍，點樣孔是否高質，確保電泳的正負極正確，檢查電泳緩沖液是否具有緩沖能力，確保DNA樣品的純度，如進行PCR產物的純化，確保樣本中沒有或只存在少量的DNA結合蛋白或其他可與DNA結合的化合物。

●  為什么DNA條帶不理想？

答：影響電泳條帶的因素很多，如凝膠種類濃度質量；上樣量過多或過少；樣本的純度不高，鹽濃度過高；電泳緩沖液緩沖能力不夠，核酸酶污染；電泳條件不正確；染色不充分或不均勻；跑膠后沒有及時拍照。

●  為什么定量數據不正確以及如何準確定量樣品？

答：樣品和Marker的上樣條件不同，參考條帶不正確，凝膠的不均勻染色或背景過高都會干擾凝膠定量結果。樣品DNA和Marker DNA在電泳前選用相同的上樣染料處理，調整樣品濃度，使其在凝膠中的含量與分子量最接近標準DNA條帶接近，樣品DNA和Marker的上樣體積盡量接近，樣品用1×上樣緩沖液稀釋；定量時通常以分子量最接近的標準條帶為參照物，分析樣品條帶的含量；利用凝膠圖像分析軟件，如SensiAnsys可對DNA進行準確定量，比目測條帶方法更精確。

●  為什么在變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠里電泳時會出現雜帶？

答：一般來說，雙鏈DNA Marker不推薦用于變性電泳，否則會產生非正常帶型，即出現所謂的雜帶。這種出現異型帶的現象，在100 bp以下的條帶極易發生。當您的實驗不可避免的要使用變性聚丙烯酰胺/尿素凝膠進行電泳時，我們建議，將樣品和Marker選用同樣的變性上樣緩沖液進行變性處理后上樣，以消除二級結構。